核酸提取是指将核酸（DNA和RNA）从细胞中提取出来的过程，总的来说蕴含细胞裂解、核酸纯化及后续核酸浓度、纯度测定的步骤。凭据原始样品的种类和核酸产品后续的各类利用主张，细胞裂解和核酸纯化步骤有分歧的处置步骤和要求。
一、尝试室中的DNA提。
案例一：幼鼠基因型判定尝试的模板DNA提取
初始样品为幼鼠尾切段；蛐团卸ǔ⑹远訢NA模板的浓度、纯度要求不高，消化提取过程相对单一。
尝试步骤：
1.将1cm尾巴切段置于1.5mL微量离心管中，参与适量裂解液（Lysis buffer）和蛋白酶（Proteinase K）于55~65℃水浴过夜消化。
2.充分消化后的尾巴样品参与沉淀液（Precipitation buffer）后用旋涡混匀器来使杂质蛋白充分沉淀，杂质沉淀后通过离心操作（如4℃，4000Xg，5min），取出溶有指标DNA的上清液，抛弃杂质沉淀。
3.上清液中参与100%异丙醇，幼心颠倒离心管30~40次，便能够将产品DNA沉降。离心操作（4℃，10000Xg或12000rpm，10min）去除上清。
4.用75%乙醇洗涤两次DNA产品，待乙醇充分挥发后，用水或TE缓冲液（Tris-EDTA buffer）收成DNA模板产品。
进行后续的PCR扩增尝试前，能够使用Nanodrop仪器来进行DNA浓度和纯度的测定来提高PCR反映的成功率。在PCR扩增尝试不顺利的情况下，也能够进一步对DNA产品的齐全度进行检测，具体步骤能够参查核酸检测和核酸扩增的有关内容。
案例二：用于沉组的质粒DNA提取
用于沉组的质粒对DNA产品的浓度、纯度和齐全度都要求较高，不然无法成功实现质粒酶切和酶连的步骤。
尝试步骤：
1.从含有过夜造就大肠杆菌的试管中取出适量菌液置于微量离心管中，低速离心（4000Xg， 5min）处置后收成大肠杆菌，除去造就液。
2.使用质粒提取试剂盒(Plasmid DNA extraction kit)提取大肠杆菌质粒。道理菌体裂解后，参与中和液（Neutralization buffer）过微型柱，使DNA特异结合于柱上，而其他杂质会过柱洗脱。最后用洗脱液(Elute buffer)洗下DNA即可得到质粒DNA产品。
3.经试剂盒提取后的质粒DNA有时必要经电泳切胶回收的操作将指标质粒DNA与其他DNA分离。切下的胶消化后经DNA纯化试剂盒纯化即可得到纯度较高的指标质粒DNA。具体的内容能够参查核酸检测的有关内容。
二、尝试室中的RNA提取
[ RNA Extraction: Principle, Procedure, Protocol and Importance – Genetic Education]：
RNA提取过程与DNA类似，也是通过裂解细胞后通过有机溶剂（苯酚、氯仿、异戊醇）沉降杂质的步骤来分离RNA。但RNA的不变性比DNA低好多，因而对RNA提取对温度和传染断根的要求更高。实研操作通常从以下几个角度来提升成功率：降低RNA水解酶活性、提升RNA不变性、使RNA与DNA和蛋白分离、仅沉降RNA、有效去除DNA。
案例一：总RNA提取
尝试步骤与DNA提取类似，但有机溶剂的使用会有所分歧。在初次离心后，混合物会分为三层，RNA溶于上层无色水相，而DNA和蛋白会处于中央层，组织残渣等杂质处于底层酚-氯仿相中2。
尝试步骤：
1.向提取样品中参与裂解液（如Trizol），裂解细胞与组织，室温静置5-8分钟。
2.参与氯仿，充分混匀后离心（4℃，12000rpm，10min），取出上清液。
3.向上清液中参与异丙醇沉降RNA，并离心（4℃，12000rpm，10min）弃去上清。
4.用75%乙醇洗涤产品两次，待乙醇挥发后参与RNase-free水溶化产品。
尝试中用到的J9集团耗材和仪器：
枪头、微量离心管、（15、50mL）离心管、迷你旋涡分离器（105003）。
